Организация деятельности медицинского лабораторного техника при подготовке и изготовлении парафиновых блоков

Когда парафин затвердевает, поверхность блока становится более прочной и в ней образуется кратероподобное углубление. Это следует учитывать при отливке деталей и работе с блоками. Парафин должен быть на 3-4 мм выше верхней части блока, если вам нужно установить его на деревянный блок. Также возможно заполнить блок большим количеством парафина и разрезать без использования засоров, что успешно применяется даже для микротома каретки.В большинстве руководств рекомендуется прикреплять блоки к деревянным столбам после обрезки и удалять излишки парафина металлическим шпателем или скальпелем, нагретым на спиртовой лампе. Затем блок расплавляется с четырех сторон одним и тем же горячим шпателем или скальпелем, чтобы обеспечить более прочное соединение основания.Заполните ткань целлоидиномЦеллоидин - растворим в эфирах нитроцеллюлозы. В гистологической практике используются 2%, 4% и 8% растворы целлоидинола, которые готовятся из пластин целлоидина или вымываются из эмульсии, и рентгеновская пленка высушивается.Чтобы приготовить 500 мл 2% раствора целлоидинола, залейте 10 г сухого целлоидина с 250 мл 100% спирта и оставьте на 1 день, затем добавьте 250 мл безводного эфира, чтобы растворить набухший в спирте целлоидин. Для получения 4% и 8% растворов количество целлоидина увеличивается в 2 и 4 раза соответственно. Растворы хранятся в плотно закрытой таре.Наполнитель целлоидина в настоящее время менее популярен, чем парафин, и в основном используется для обработки трудно режущих тканей и объектов больших размеров, из которых трудно получить хорошие срезы парафина. Целлоидиновая заливка также используется в тех случаях, когда необходимо не подвергать исследуемый материал воздействию высоких температур. Кроме того, наполнители в целлоидине позволяют добиться наилучших результатов при наличии больших пустот, пустот и слоев различной консистенции в объектах.Эфир и сухой целлоидин огнеопасны, поэтому при работе с ними следует соблюдать осторожность.Обезвоженный материал помещают в смесь 100% спирта с эфиром (1: 1) на 4-6 часов, затем в 2% раствор целлоидина на 2-3 дня и затем по 4% каждый на 5-7 дней. и 8% решений. Пропитанный кусок заливают свежим 8% целлоидином и упаковывают в пары хлороформа (в эксикаторе). Уплотненный таким образом материал выливают на хранение в 70% спирт. Срезанные блоки приклеивают к деревянным подушкам с толстым целлоидином за 1 день до резки 

Особенности заливки в целлоидин крупных объектов
 Внедрение целлоидина, а также вложение парафина позволяет получать гистотопографические разрезы. Тканевые пластины органа толщиной 1 см помещают между двумя проволочными сетками (как для парафиновой заливки), фиксируют, промывают и обезвоживают. Общая продолжительность отливки крупных предметов из целлоидина составляет от 2 до 2,5 месяцев. Используя заливку целлоидином, вы можете получить гистотопографические срезы толщиной около 20 микрон.Залейте целлоидин парафиномЭтот метод рекомендуется для обработки объектов, которые можно легко сжать при встраивании парафина, таких как Как органы кроветворения, мезенхимальные ткани и органы и ткани с многослойной структурой (трахея, кожа и др.).Смесь целлоидина с касторовым маслом (1: 1) также используется для улучшения замачивания предметов, оставленных в нем на 1-2 дня. Для удаления касторового масла материал промывают тремя порциями хлороформа.

Заливка в желатин
Для изучения липидов в рыхлых тканях и органах, а также для исследования эмбриональных объектов успешно используется отливка из водорастворимого биополимерного желатина. Используется прозрачный кристаллический пищевой желатин, из которого готовят 25% и 12,5% растворы.Добавить 75 мл 1% водного раствора Фернола (карболовой кислоты) к 25 г желатина и поместить в термостат при 37 ° С. Желатин набухает и после смешивания образует густой 25% раствор. При разбавлении в два раза теплой (37 ° С) карболовой водой получают 12,5% раствор желатина.Приготовленные растворы разливают в чистые, сухие пробирки для одноразового использования и закрывают пробкой. Желатин можно долго хранить в замороженном состоянии в темном прохладном месте.Схема наполнения желатина по Волкову - ЕлецкийМатериал, налитый в желатин, нарезают на морозильном микротоме. Желатин удаляют с полученных участков, чтобы избежать окрашивания фона. Для этого ломтики помещают в 10% -ный раствор гидроксида калия при 37 ° С на 30 минут. Затем их моют в водопроводной воде и красят. Цветные участки заключены в поливиниловый спирт или глицериновый желатин.Приготовление поливинилового спирта. Порошок поливинилового спирта промывают в 96% спирте (2 слоя), эфире (3 смеси) и сушат. Добавьте 100 мл дистиллированной воды к 16 г промытого порошка и оставьте набухать в течение 12 часов. Облученную массу нагревают в течение 20-30 минут на кипящей водяной бане. На поверхности густой мутной жидкости образуется пленка с пузырьками, которая удаляется и раствор фильтруется через 4 слоя марли. Поливиниловый спирт можно использовать в качестве промежуточной среды для получения постоянных препаратов после резки на замороженном микротоме. Сначала поливиниловый спирт наносят на диск, обращенный к стеклу, а после формирования тонкой пленки (через 6-12 часов) препарат помещают в полистирол или бальзам.Приготовление желатина глицерина. К 7 г желатина добавляют 41 мл дистиллированной воды и дают набухать в течение 3-4 часов, затем добавляют 50 мл глицерина и 1 г фенола. Смесь нагревают на водяной бане при постоянном перемешивании. Раствор фильтруют через фильтр с большими порами, разливают в буры, закупоривают и хранят в холодильнике.Заполненные желатином срезы ткани, полученные на замороженном микротоме, могут быть обезвожены в спиртах, очищены в карболическом ксилоле и заключены в бальзам или полистирол.Другие схемы рекомендуют различные концентрации желатина и время пребывания в объектах.
Залейте водорастворимые пластики
Для целей гистохимии, в частности для обнаружения липидов и ферментов, разлив текстиля в синтетические водорастворимые пластики - полиэтиленгликоль, поливакс, метилметакрилат и т.д. - оказался успешным.
Заливка в полиэтиленгликоль разной молекулярной массы по Ринархарту-Абул-ХейКусочки блоков, заполненных полиэтиленгликолем, готовят на замороженном микротоме, окрашивают, помещают на предметное стекло микроскопа и помещают в смесь глицерина и желатина или раствора диэтиленгликоля (диэтиленгликоль - 4 части, дистиллированная вода - 5 частей, 40% формалин - 1) ,Заполните поливакс из SteedmanПоливакс (Polyestervax) представляет собой смесь 9: 1 полиэтиленгликоля 400 дистеарата и ацетилового спирта.Заполните метилметакрилат оленьим кнехтомСмола имеет сложный состав и состоит из четырех компонентов, которые смешиваются в определенном порядке:1. 10 мл метилметакрилата (А)2. + 5 мл полиэтиленгликоля (В)3. + 3 мл дибутилфталата (В)4. + 0,2 г бензоилпероксида (G).Для парафиновых блоков используется плоско-плоский микротом (нож), а для других - плоско-вогнутый. Угол наклона: 13-15 градусов. Сначала сделайте поверхность такой же, затем отрежьте ее и бросьте в воду при температуре 35-40 ° C (если вы добавите несколько капель казеинового клея в воду, фиксация станет намного лучше, а фон отсутствует) и поймайте затем положите их на наложенное стекло. При выполнении целлоидных разрезов поверхность увлажняют спиртом кисточкой.После этого разрезанное стекло сушат (6-12 часов при 37 ° С или 10-15 минут при 56 ° С. Во втором случае разрез лучше фиксируется, но требуется дополнительная порция ксилола и увеличение времени депарафинизации). Стол с подогревом.

Хранение парафина, эксплуатация
Хранение парафина рекомендуется в сухом и прохладном месте. Срок годности этого продукта может сохраняться веками при правильном хранении.
Он состоит из смеси углеводородов, полученных при переработке нефтепродуктов.



ГЛАВА 2. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
2.1. База исследования
Исследование проводилось на ____________________________ в период с __________ по _______________
2.2. Результаты исследования
Парафины имеют разную температуру плавления – от +45- +50°С(мягкий парафин) до +58-+60°С (твердый парафин). Для пропитываниятканейобычнорекомендуетсяпарафинсболеевысокойтемпературойплавления. Смешиванием "мягкого" и "твердого" парафинов можно получить парафины с разной температурой плавления. Так как парафин не растворяется в воде, для пропитывания им фиксированной ткани (в случае водосодержащих фиксаторов), необходимо предварительно удалить из ткани воду и заместить ее органическими растворителями парафина. Для этой цели широко применяется ступенчатое, последовательное,обезвоживание фиксированнойткани спиртамисвозрастающейконцентрацией (от 30% до 100%) с последующим замещением спиртаодним из органическихрастворителей парафина: бензолом, хлороформом,сероуглеродом, четыреххлористымуглеродом, толуолом, ксилоломидр.
. Последовательностьопераций при заливкефиксированной ткани в парафин
Важно использовать обезболивающие растворители, так как это приведет к более быстрому удалению растворителя из материала и его замене на парафин. С этой точки зрения дисульфид углерода и хлороформ являются наиболее удобными. В настоящее время три типа парафиновых смесей выпускаются под общими обозначениями Paraplasts («Regular», «Plus» и «X-Tra»). В дополнение к парафинам с различными температурами плавления, эти смеси содержат различные полимерные добавки, которые придают парапластам разную степень твердости. Большой опыт показал, что литье в Paraplast «X-Tra» позволяет резать от 2 до 4 микрон толщиной, что является паспортными данными »)Артефакт (сделанный из латинского искусства - искусство и факт) - это то, что искусственно создано. В гистологии артефакты называются признаками или структурами, которые возникают случайно или из-за плохой обработки лекарств. Искажение истинного типа ткани может произойти на любой стадии изготовления препарата. Наиболее распространенные артефакты фиксации:· Посмертная дегенерация - происходит при слишком поздней фиксации или при удалении очень больших кусков материала· Морщины - Происходит, когда фиксация слишком длинная· Осаждение (темно-коричневый пигмент в виде зерен или комков) - плохое удаление фиксаторов при использовании кислотного формалина Для удаления пигментных зерен (отложений) на препарате размещены секции:· В 1-5% растворе аммиака в течение 15-20 минут· В 70% спирте на 15-20 минут· В 1% растворе гидроксида калия в 80% спирте (1:25) в течение 10 минутЗатем срезы промывают водой и окрашивают Чрезмерное уплотнение можно исправить, поместив кусочки ткани в 10%-ный раствор лимонной кислоты на 1-2 часа.Проявления посмертной дегенерации не могут быть устранены.
Внедрение образцов тщательно. Внедрение - важный шаг, требующий вдумчивого подхода. Неосторожное встраивание может значительно усложнить микротомию. • Избегайте недостаточного заполнения кассеты, так как это может привести к нестабильному зажиму в микротоме и привести к резке толстых, а затем тонких срезов и другим проблемам. • Избегайте переполнения кассет, поскольку это может помешать правильное выравнивание поверхности блока для секционирования. • Излишки воска на внешней стороне кассеты должны быть удалены перед зажимом, чтобы обеспечить надежную фиксацию блока во время секционирования. • Ориентация образца очень важна
Поместите микротом на устойчивую скамью, подальше от воздушных сквозняков, дверных проемов и проходящего персонала. Любое движение воздуха от кондиционеров или по другим причинам может затруднить работу с секциями. • Предпочтительны регулируемая по высоте скамья и эргономичное кресло. • Очень важно, чтобы персонал не отвлекался при использовании микротома из-за риска получения травмы от чрезвычайно острые лезвия. При размещении микротомов в лаборатории следует учитывать возможность взаимодействия с другими сотрудниками. • Желательно иметь нескользкий настил в непосредственной близости от микротомов, поскольку неизбежно осколки воска попадут на пол, где они могут производить скользкая поверхность. Многие лаборатории используют противоскользящее покрытие, чтобы сделать окружающую среду более безопасной.
Вы должны быть знакомы с функциями безопасности используемого микротома и соблюдать некоторые основные правила при резке секций: • Микротомные ножи и одноразовые лезвия чрезвычайно острые и могут нанести серьезные травмы, если при работе с ними не будут приняты надлежащие меры предосторожности. Несчастные случаи происходят, когда микротомист отвлекается и не концентрируется полностью. • Используйте щипцы или кисть вместо пальцев для захвата участков или фрагментов воска с поверхности лезвия или блока. • Вращающиеся микротомы Leica оснащены защитным кожухом (защитный кожух или защитный кожух), замком маховика и тормозом маховика для обеспечения безопасного Эксплуатация. • Защитный кожух можно установить так, чтобы он покрывал всю длину режущей кромки • Замок маховика заблокирует головку объекта в верхней части хода резания и должен использоваться при замене блоков. • Защитный кожух должен быть на месте, а замок маховика задействован, когда блок вставляется или снимается с зажима кассеты, или когда какие-либо манипуляции с блоком предпринимаются, когда нож или лезвие на месте. Охрана также должна использоваться, когда микротом оставлен без присмотра. • Маховичный тормоз блокирует микротом, когда ручка находится в любом положении и используется при выравнивании поверхности блока или регулировке грубой подачи.
Нож или лезвие следует вынимать из микротома, когда инструмент оставлен без присмотра или при чистке инструмента. Это лучше всего сделать, отсоединив лезвие, а затем с помощью выталкивателя лезвия на левой стороне ограждения, чтобы начать перемещение лезвия вбок из зажима. Затем его можно схватить пинцетом (не пальцами) или взять с помощью магнита на конце щетки Leica и безопасно удалить. Использованные лезвия должны быть надлежащим образом размещены в контейнере для «острых предметов» или в пазу «использованных лезвий» в основании дозатора лезвий. • Никогда не кладите нож или лезвие на скамейку или в коробку режущей кромкой вверх. Если вам случится уронить клинок, пусть он упадет. Ни в коем случае не пытайтесь поймать это (естественное рефлекторное действие, от которого вы должны остерегаться).
Артефакты подготовки гистологических срезов и способы их устранения

 Причины проблемы Алгоритм действий для устранения причины: Срезы получаются слишком тонкие или толстые   1.Угол наклона лезвия слишком мал Отрегулируйте угол наклона 2.Образец плохо зафиксирован (в ориентационной насадке или зажиме для кассет) Проверьте, чтобы все винты и ручки, фиксирующие образец, были затянуты. Если необходимо, то затяните их еще раз. 3.Микротомный нож или лезвие затупились Используйте другие части режущего края или возьмите новый нож или лезвие Срезы сжатые.   1.Микротомный нож или лезвие затупились Используйте другие части режущего края или возьмите новый нож или лезвие 2.К ножу/лезвию прилип парафин Очистите нож/лезвие с помощью щетки, смоченной в ксилоле. Во время чистки ведите щетку вверх по направлению от режущего края, 3.Блок слишком теплый Непосредственно переде микротомией, охладите блок при помощи специального спрея, на охлаждающей плате или в ледяной воде 4.Угол наклона лезвия слишком велик Отрегулируйте угол наклона (постепенно уменьшайте угол наклона, пока не найдете оптимальный). Проверьте, зажат ли винт листовой пружины Срезы имеют царапины или разрывы   1.Дефект режущей поверхности Немного продвиньте лезвие и посмотрите, изменилось ли вместе с этим расположение царапин на срезе. Если царапины тоже сместились, то замените лезвие 2.На режущий край лезвия налип парафин Очистите лезвие с помощью щетки, смоченной в ксилоле. Во время чистки ведите щетку вверх по направлению от режущего края Не получается серия срезов   1. Неверно выставлен угол наклона лезвия (слишком вертикально) Отрегулируйте угол наклона (постепенно изменяйте угол наклона, пока не нейдете оптимальный). 2. Блок слишком теплый Непосредственно перед микротомией, охладите блок при помощи специального спрея, на охлаждающей плате или в ледяной воде 3. Ткань плохо проведена Проведите повторную проводку и заливку образца 4. Неправильно выбран тип лезвия Используйте лезвие для серийных срезов с углом режущего края 35º 5. Лезвие затупилось Попробуйте резать другим участком лезвия или поменяйте лезвие на новое На срезах появляются отверстия:   1. Ткань плохо проведена Проведите повторную проводку и заливку образца 2. На режущий край лезвия налип парафин Очистите лезвие с помощью щетки, смоченной в ксилоле. Во время чистки ведите щетку вверх по направлению от режущего края, 3. Поврежден режущий край лезвия Передвиньте лезвие или поменяйте его на новое Срезы закручиваются   1. Неверно выставлен угол наклона лезвия (слишком вертикально) Отрегулируйте угол наклона ножа\лезвия 2. Лезвие слишком острое Проведите тримминг лезвия, используя пустой парафиновый блок 3. Неправильно выбран тип лезвия Используйте другие типы лезвий  
Артефакты окрашивания и заключения препаратов:





ЗАКЛЮЧЕНИЕ
Технология организации производственных процессов описана в терминах процессного подхода, который позволяет создать логически структурированную, документированную и прозрачную систему управления патоморфологической лабораторией.
Показано, что интегрированная технологическая система должна обеспечивать проточный принцип организации технологического процесса и роботизации важнейших технологических этапов патоморфологической лаборатории. Эффективность комплексного подхода иллюстрируется сравнительной технико-экономической оценкой ручных и аппаратных методов гистологической обработки тканей с точки зрения оптимизации затрат, совершенствования организации и компьютеризации технологического процесса. Было установлено, что только за счет сокращения времени, необходимого для выполнения отдельных технологических операций вручную, можно значительно снизить косвенные затраты и экономические потери: использование готовых парафиновых смесей - до 85,5% - с готовыми растворами гематоксилин-Майера - До 8,4% при использовании одноразовых микротомных ножей - до 98,5%. Представленные материалы могут быть полезны профессионалам для принятия решений относительно логистики морфологических лабораторий
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
Гергова М.М. Микросателлитная нестабильность в опухолях яичников: частота встречаемости и клинико-морфологические особенности: Дис.... канд. мед. наук. СПб. 2009
Донсков С.А., Ганина Е.Б., Шестакова В.Г. ТЕХНИКА БЕЗОПАСНОСТИ ПРИ РАБОТЕ СТУДЕНТОВ В ГИСТОЛОГИЧЕСКОЙ ЛАБОРАТОРИИ В РАМКАХ УЧЕБНОГО ПРОЦЕССА. // В сборнике: Актуальные проблемы безопасности жизнедеятельности и экологии Сборник научных трудов II международной научно-практической конференции с научной школой для молодежи. Тверской государственный технический университет. 2016. С. 253-254.
Зиматкин С.М. Гистология. / Учебное пособие. - Минск, 2014
Клейменова Н.В. ГИСТОЛОГИЧЕСКАЯ ТЕХНИКА, ЦИТОЛОГИЯ И ОБЩАЯ ЭМБРИОЛОГИЯ. / Учебно-методическое пособие для самостоятельной внеаудиторной и аудиторной работы студентов факультета биотехнологии и ветеринарной медицины специальности 36.05.01 - Ветеринария / Орел, 2015
Клейменова Н.В., Смагина Т.В., Пискунова О.Г., Клейменов И.С. основы гистологической техники тканей животных. / Учебное пособие. - Орел, 2013
Константинова И.С., Булатова Э.Н., Усенко В.И. ОСНОВЫ ЦИТОЛОГИИ, ОБЩЕЙ ГИСТОЛОГИИ И ЭМБРИОЛОГИИ ЖИВОТНЫХ. - Санкт-Петербург, 2015
Коржевский Д.Э., Гиляров А.В. Основы гистологической техники. - Санкт-Петербург, 2010
Литвяков Н.В. Регуляция экспрессии генов множественной лекарственной устойчивости в опухоли молочной железы при проведении неоадъювантной химиотерапии: Дис. д-ра мед. наук. Томск. 2015
Макаров И.Ю., Калекин Р.А., Звягин В.Н., Иванов П.Л., Гусаров А.А., Саломатин Е.М., Шилов И.А. Судебная медицина и судебно-медицинская экспертиза. Национальное руководство / Москва, 2014
Мальков П.Г. МОДЕРНИЗАЦИЯ ПАТОМОРФОЛОГИЧЕСКИХ ЛАБОРАТОРИЙ С ПОЗИЦИЙ ТЕОРИИ УПРАВЛЕНИЯ РИСКАМИ. // Российский онкологический журнал. 2011. № 2. С. 40-42
Мальков П.Г., Франк Г.А. ВЛИЯНИЕ ТЕХНИЧЕСКИХ ХАРАКТЕРИСТИК ОБОРУДОВАНИЯ ДЛЯ ГИСТОЛОГИЧЕСКОГО ИССЛЕДОВАНИЯ НА СЕБЕСТОИМОСТЬ ИССЛЕДОВАНИЯ.// Архив патологии. 2010. Т. 72. № 5. С. 24-27
Мальков П.Г., Франк Г.А. Материально-техническое обеспечение и пути снижения текущих затрат патоморфологической лаборатории. // Архив патологии. 2010. Т. 72. № 3. С. 33-35
Мальков П.Г., Франк Г.А. МАТЕРИАЛЬНО-ТЕХНИЧЕСКОЕ ОБЕСПЕЧЕНИЕ И ПУТИ СНИЖЕНИЯ ТЕКУЩИХ ЗАТРАТ ПАТОМОРФОЛОГИЧЕСКОЙ ЛАБОРАТОРИИ. //Архив патологии. 2010. Т. 72. № 5. С. 27-29
Мальков П.Г., Франк Г.А., Сидорова В.П. РАЦИОНАЛЬНЫЙ ВЫБОР ТЕХНОЛОГИЙ И ОБОРУДОВАНИЯ ПРИ МАТЕРИАЛЬНО-ТЕХНИЧЕСКОМ ОСНАЩЕНИИ ПАТОМОРФОЛОГИЧЕСКОЙ ЛАБОРАТОРИИ. // Архив патологии. 2010. Т. 72. № 1. С. 45-50
Нуралиева Р.С. Подготовка медицинских лабораторных техников в условиях социального партнерства в Астраханском базовом медицинском колледже. // В сборнике: Актуальные проблемы естествознания и естественнонаучного образования материалы IV Международной научно-практической конференции. Составители: Л. Н. Орлова, Н. С. Гольцова; научные редакторы: Н. С. Гольцова (педагогические науки), Т. А. Корчагина, Ю. В. Москалец (биологические науки). 2016. С. 85-88.
Основы обеспечения качества в гистологической лабораторной технике. Руководство / П. Г. Мальков [и др.] ; под ред. П. Г. Малькова, Г. А. Франка ; Российская мед. акад. последипломного образования. Москва, 2011
Ошуркова Ю.Л. Основы микроскопической и гистологической техники. // Методические указания по организации самостоятельной работы и проведению лабораторных занятий по дисциплине "Цитология, гистология, эмбриология" / Вологда-Молочное, 2015
Пешков М.В. Декальцинация в гистологической лабораторной технике/// Архив патологии. 2012. Т. 74. № 6. С. 43-45
Пиголкин Ю.И., Должанский О.В., Коростылев С.А., Пальцева Е.М., Федоров Д.Н. О ВОЗМОЖНОСТИ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ГЕНЕТИЧЕСКОЙ ИДЕНТИЧНОСТИ ТКАНЕЙ СО ЗЛОКАЧЕСТВЕННЫМИ ОПУХОЛЯМИ, ЗАЛИТЫМИ В ПАРАФИНОВЫЕ БЛОКИ. // Судебно-медицинская экспертиза. 2016. Т. 59. № 3. С. 16-19
Пиголкин Ю.И., Дубровин И.А., Горностаев Д.В., Должанский О.В. Атлас по судебной медицине. М.: ГЭОТАР-Медиа. 2010.
Пиголкин Ю.И., Леонов С.В., Леонова Е.Н., Нагорнов М.Н. Метод трехмерного моделирования при реконструкции обстоятельств происшествия с учетом следов крови. Судебно-медицинская экспертиза. 2014;5:4-6
Прудников В.С., Луппова И.М., Жуков А.И., Федотов Д.Н. ОРГАНИЗАЦИЯ ГИСТОЛОГИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЙ, ТЕХНИКА ИЗГОТОВЛЕНИЯ И ОКРАСКИ ГИСТОПРЕПАРАТОВ. // учебно-методическое пособие / Витебск, 2011.
Сидельникова А.А. Лабораторно-технические приемы и лабораторное оборудование в гистологической технике. // В сборнике: Реестр новых научных направлений Москва, 2018. С. 163-164
Стародубов В.И., Мальков П.Г., Морозова М.А., Франк Г.А., Москвина Л.В. КОМПЛЕКСНОЕ ТЕХНОЛОГИЧЕСКОЕ РЕШЕНИЕ ОСНАЩЕНИЯ И АВТОМАТИЗАЦИИ ПАТОМОРФОЛОГИЧЕСКИХ ЛАБОРАТОРИЙ. // Социальные аспекты здоровья населения. 2011. № 5 (21). С. 8
Трояновская Л.П., Паршин П.А., Сулейманов С.М., Белогуров А.Н., Курдюков А.А., Павленко О.Б., Мозговая Е.И. ОСНОВЫ МОРФОЛОГИЧЕСКИХ МЕТОДОВ ИССЛЕДОВАНИЙ. // Допущено Учебно-методическим объединением высших учебных заведений Российской Федерации по образованию в области зоотехнии и ветеринарии в качестве учебного пособия для студентов высших учебных заведений, обучающихся по специальности 36.05.01 «Ветеринария» (квалификация «ветеринарный врач»), по специальности 36.03.02 «Зоотехния» (квалификация (степень) «бакалавр») / Воронежский государственный аграрный университет имени императора Петра I. Воронеж, 2015
Храмцов А.И., Храмцова Г.Ф., Хмельницкая Н.М. ТЕХНИКА ИЗГОТОВЛЕНИЯ И АНАЛИЗ ТКАНЕВЫХ МАТРИЦ. // Уральский медицинский журнал. 2011. № 1 (79). С. 34-38
Alvarez K, Kash SF, Lyons-Weiler MA, Kim HJ, Peterson LE, Mathai B, Hagenkord JM, Monzon FA. Reproducibility and performance of virtual karyotyping with SNP microarrays for the detection of chromosomal imbalances in formalin-fixed paraffin-embedded tissues. Diagn Mol Pathol. 2010 Sep;19(3):127-134 DOI: 10.1097/PDM.0b013e3181d527c.5
Bandelt HJ, Salas A. Contamination and sample mix-up can best explain some patters of mtDNA instabilities in buccal cells and oral squamous cell carcinoma. BMC Cancer. 2009 Apr 16;9:113 DOI: 10.1186/1471-2407-9-113
Birch AH, Arcand SL, Oros KK, Rahimi K, Watters AK, Provencher D, Greenwood CM, Mes-Masson AM, Tonin PN. Chromosome 3 anomalies investigated by genome wide SNP analysis of benign, low malignant potential and low grade ovarian serous tumours. PLoS One. 2011;6(12):e28250. E[ud 2011 Dec 6 DOI: 10.1371/journal.pone.0028250
Bossuyt V, Buza N, Ngo NT, Much MA, Asis MC, Schwartz PE, Hui P. Cancerous ‘floater': a lesson learned about tissue identity testing, endometrial cancer and microsatellite instability. Mod Pathol. 2013 Sep;26(9):1264-1269 DOI: 10.1038/modpathpl.2013.63
Egeland T, Fonnelop AE, Berg PR, Kent M, Lien S. Complex mixtures: a critical examination of a paper by Hemer et al. Forensic Sci Int Genet. 2012 Jan;6(1)64-69 DOI: 10.1016/j.fsigen.2011.02.003
Filoglu G, Bulbul O, Rayimoglu G, Yediay FE, Zorlu T, Ongoren S, Altuncul H. Evaluation of reliability on STR typing at leukemic patients udes for forensic purposes. Mol Biol Rep. 2014 Jun;41(6):3961-3972 DOI: 10.1007/s11033-014-3264-9
Holland AJ, Cleveland DW. Boveri revisired: chromosomal instability, aneuploidy and tumorigenesis. Nat Rev Mol Cell Biol. 2009 Jul;10(7):478-487 DOI: 10.1038/nrm2718
John T.A. Facilities available for biomedical science research in the public universities in Lagos. Nigeria. Niger Postgrad. Med. J. 2010;17(1):6-14
Li Q, Li M, Ma L, Li W, Wu X, Richards J, Fu G, Xu W, Bythwood T, Li X, Wang J, Song O. A method to evaluate genome-wide methylation in archival formalin-fixed, paraffin-embedded ovarian epithelial cells. PLoS One. 2014 Aug 18;9(8):e104481 DOI: 10.1371/journal.pone.0104481
Muirhead D., Aoun P., Powell M., Juncker F., Mollerup J. Pathology economic model tool: a novel approach to workflow and budget cost analysis in an anatomic pathology laboratory. Arch. Pathol. Lab. Med. 2010;134(8):1164-1169
Ng CK, Cooke SL, Howe K, Newman S, Xian J, Temple J, Batty EM, Pole JC, Langdon SP, Edwards PA, Brenton JD. The role of tandem duplicator phenotype in tumour evolution in high-grade serous ovarian cancer. J Pathol. 2012 Apr;226(5):703-712 DOI: 10.1002/path.3980
Ondrejka SL, Schaeffer DF, Jakubowski MA, Owen DA, Bronner MP. Does neoadjuvant therapy alter KRAS and/or MSI results in rectal adenocarcinoma testing? Am J Surg Pathol. 2011 Sep;35(9):1327-1330 DOI: 10/1097/PAS.0b013e3182253800
ornman DM, Hester ME, Schuetter JM, Kasoji MD, Minard-Smith A, Barden CA, Nelson SC, Godbold GD, Baker CH, Yang B, Walther JE, Tornes IE, Yan PS, Rodriguez B, Bundscheuh R, Dickens ML, Young BA, Faith SA. Short-read, high-throughput sequencing technology for STR genotyping. Biotech Rapid Dispatches. 2012 Apr;2012:1-6
Ruan X, Liu H, Boardman L, Kocher JP. Genome-wide analysis of loss of heterozygosity in breast infiltrating ductal carcinoma distant normal tissue highlights arm specific enrichmen and expansion across tumor stage. PLoS One. 2014 Apr 18;9(4):e95783. doi: 10.1371/journal.pone.0095783.eCollection 2014
Tosca L, Brisset S, Petit FM, Lecerf L, Rousseau G, Bas C, Laroudie M, Maurin ML, Tapia S, Picone O, Prevot S, Goossens M, Labrune P, Tachdjian G. Recurrent 70.8 Mb4q22.2q32.3 duplication due to ovarian germinal mosaicism. Eur J Hum Genet. 2010 Aug;18(8):882-888 DOI: 10.1038/ejhg.2010.46









64