Crithidia fasciculate

В отличие от Leishmania spp., паразиты из рода Crithidia не являются патогенными для человека [9].  Crithidia fasciculata часто используют для тестирования новых терапевтических стратегий против паразитарных инфекций. Он часто используется в качестве модельного организма в исследованиях биологии трипаносоматид, которые затем могут применяться для понимания биологии инфекционных видов человека.Большой интерес представляет выяснение антигенной взаимосвязи между непатогенными и патогенными для человека видами трипаносомид. Установлено, что при введении мышам полисахаридов из культур непатогенных для человека простейших — Herpetomonassp. и Crithidia fasciculata — повышалась резистентность животных к Т. cruzi, возбудителю болезни Чагаса у человека. Наличие перекрестных иммунологических реакций между полисахаридами различных типов послужило основанием для вывода о том, что антигенная общность между этими веществами обусловлена не структурой полимера, а отдельными мономерами или олигомерами одинакового химического строения [6].7. Crithidia fasciculatа и окружающая среда.Паразитическое простейшее из отряда трипаносомид Crithidia fasciculatа не способно поражать человека и существует в окружающей среде как паразит насекомых. Его жизненный цикл имеет две морфологически разные стадии: свободная форма хоаномастиготы, которая имеет длинный наружный жгутик для подвижности, и неподвижная форма амастиготы в кишечнике комара. Амастиготы выделяются с фекалиями, загрязняющими среду обитания комаров (цветы, нектар которых используется в качестве пищи). Передача происходит, когда амастиготы проглатываются личинками комаров [6].Жизненный цикл Crithidiafasciculataразвивается в кишечнике комаров, которые заражаются при попадании в организм амастигот, выделяемых с фекалиями других хозяев. Затем амастиготы подвергаются процессу дифференциации в хоаномастиготы, чтобы обеспечить правильную колонизацию кишечника. Хоаномастиготы дифференцируются обратно в неподвижные круглые амастиготы, которые прикрепляются к эпителию кишечника гемидесмосомами, часто приводя к повреждению. Зараженные взрослые комары загрязняют водную среду амастиготами, а также цветами, когда питаются нектаром, тем самым обеспечивая шансы на передачу паразита. Амастиготы высвобождаются в кале или во всем теле мертвого насекомого. В конце концов, личинки и куколки комаров заражаются в водной среде обитания, и, наконец, амастиготы передаются взрослому комару через кишечник с метаморфозом, приводящим к завершению жизненного цикла [1].Выводы.Несмотря на то, что Crithidia fasciculatа является паразитическим простейшим поражающим только насекомых, в частности комаров сем. Culicidae, это простейшее представляет большой интерес для исследований. Crithidia fasciculata часто используют для тестирования новых терапевтических стратегий против паразитарных инфекций. Он часто используется в качестве модельного организма в исследованиях биологии трипаносоматид, которые затем могут применяться для понимания биологии инфекционных видов человека.Сравнение метаболизма и особенностей проявления паразитарных свойств Crithidia fasciculatа с видами того же семейства, у которых развиваются дигенетические жизненные циклы, ответственные за лейшманиоз и трипаносомоз, представляет большой интерес, поскольку, эти паразиты поражают миллионы людей во всем мире. Таким образом, использование Crithidia fasciculatа в качестве модельного организма для исследования паразитарных инфекций человека, таких как, лейшманиоз и трипаносомоз, представляется обоснованным и перспективным.Список литературы.Фролов А. О., Малышева М. И., Костыгов А. Ю. Трансформации жизненных циклов в эволюционной истории трипаносоматид. Эндотрансформации и аберрации. // Паразитология. 2016. Т.50. № 2. С. 97-113.Alcolea P.J., Alonso A., García-Tabares F., Toraño A., Larraga V. An Insight into the proteome of Crithidiafasciculatachoanomastigotes as a comparative approach to axenic growth, peanut lectin agglutination and differentiation of Leishmania spp. promastigotes. // PLoS One. 2014. V. 9. №12. P.e113837.Berger L.C., Wilson J., Wood P., Berger B.J. Methionine Regeneration and Aspartate Aminotransferase in Parasitic Protozoa // Journal of Bacteriology. 2001. V.183. P.4421-4434.Brooker B. E. The Fine Structure of Crithidia.fasciculata with Special Reference to the Organelles Involved in the Ingestion and Digestion of Protein // Z. Zellforsch. 1971. V.116. P. 532—563.Cazzulo J.J. Aerobic fermentation of glucose by trypanosomatids. // FASEB J. 1992. V.6. P.3153–3161.Filosa J.N., Berry C.T., Ruthel G., Beverley S.M., Warren W.C., Tomlinson C., Myler P.J., Dudkin E.A., Povelones M.L., Povelones M. Dramatic changes in gene expression in different forms of Crithidiafasciculata reveal potential mechanisms for insect-specific adhesion in kinetoplastid parasites. // PLoSNegl Trop Dis. 2019. V.13. №7. P.e0007570.Johnson C. E., Englund P. T. Changes in Organization of Crithidiafasciculata Kinetoplast DNA Replication Proteins during the Cell Cycle. // J Cell Biol. 1998. V.143. №7. P. 911–919.Lukes J., Guilbride D. L., Votýpka J., Zíková A., Benne R., Englund P. T.Kinetoplast DNA network: evolution of an improbable structure. // Eukaryotic Cell. 2002. V.1, №.4. P. 495—502.Shapiro T. A., Englund P. T. The structure and replication of kinetoplast DNA. // Annual Review Of Microbiology. 1995. V. 49. P. 117—143.Schwartz J.B.Anaerobic Metabolism of Crithidiafasciculata. // J. Protozool. 1961. V.8. №1. P.9-12.