Моделирование стресса в эксперименте. Маркеры эффективности модели
Заказать уникальный реферат- 28 28 страниц
- 27 + 27 источников
- Добавлена 26.03.2024
- Содержание
- Часть работы
- Список литературы
Цель 4
Задачи исследования: 4
ОЦЕНКА ВЫРАЖЕННОСТИ СТРЕССОВЫХ ВОЗДЕЙСТВИЙ. БИОМАРКЕРЫ СТРЕССА. 13
Поведенческие маркеры стресса. 14
Физиологические маркеры стресса. 16
Биохимические маркеры 21
ЗАКЛЮЧЕНИЕ 24
Список источников: 25
Увеличение х 15 000 (Бузуева И.И. Влияние хронического стресса на структуру надпочечника крыс гипертензивной линии НИСАГ после превентивного лечения теразозином. 2010)Рисунок 9. Деструкция хромаффинной клетки мозгового вещества надпочечника крыс НИСАГ группы «плацебо» в условиях хронического стресса. Увеличение х 15 000(Бузуева И.И. Влияние хронического стресса на структуру надпочечника крыс гипертензивной линии НИСАГ после превентивного лечения теразозином. 2010)Биохимические маркерыГипоталамо-гипофизарно-надпочечниковая система является важной гормональной системой, у которой отчетливо выражен циркадный режим. Воздействие стресса меняет этот ритм и негативно влияет на здоровье как человека, так и экспериментальных животных. Интенсивность активации гипоталамо-гипофизарно-надпочечниковой системы связана с уровнем стресса, испытываемого животными[17]. Крысы особенно чувствительны к стрессу, и даже умеренное стрессовое воздействие сопровождается значительным повышением уровня глюкокортикоидов, который приближается к амплитуде суточного ритма.Кортикостероиды, такие как кортизол, являются гормонами стресса, которые вырабатываются в ответ на активацию гипоталамо-гипофизарно-надпочечниковой оси (ГГН). Повышенный уровень кортикостероидов в крови указывает на наличие стрессовой ситуации [23]. Глюкокортикоиды являются стероидами, воздействующими на обмен белков, жиров, углеводов и нуклеиновых кислот. Они обладают способностью регулировать эти процессы в организме.Молекула холестерина является предшественником кортизола. Процесс превращения регулируется актг - адренокортикотропным гормоном гипофиза. Если актг выделяется в небольшом количестве, то образуется много кортизола из холестерина, и наоборот - такой принцип продукции гормонов в организме называется отрицательной обратной связью. Гипофиз контролирует работу всех желез внутренней секреции и вырабатывает свои регуляторные гормоны [27].После попадания кортизола в кровь он связывается с белком транскортином, который образуется в печени, для доставки к тканям. В мышцах, лимфатической, соединительной и жировой тканях гормон затормаживает образование глюкозы и аминокислот, а в печени запускает процесс образования глюкозы. Это приводит к повышению уровня глюкозы в крови. Кортизол также способствует развитию гипергликемии путем снижения образования гликогена в мышцах, который образуется из глюкозы, а также с усиленным распадом жиров [7,14,23,27].Так в ряде экспериментов на крысах было показано, что воздействие разных видов стресса вызнает разный уровень подъема кортизола, и напрямую коррелирует с тяжестью стресса (Рисунок 10).Рисунок 10. Роль кортизола в патогенезе стрессовых расстройств.ЗАКЛЮЧЕНИЕИспользование маркеров стресса имеет решающее значение для оценки валидности моделей стресса у лабораторных животных. Адекватные и релевантные модели обеспечивают более достоверные данные, которые могут быть использованы для изучения механизмов стресса и разработки эффективных стратегий борьбы с ним. Постоянные исследования и разработка новых маркеров стресса продолжают улучшать наше понимание стрессовой реакции и ее последствий.Изучение стресс-индуцированных расстройств является важной областью исследований, которая может помочь нам лучше понять влияние стресса на психику человека и разработать эффективные методы лечения.Список источников:Международная классификация болезней (МКБ-10) с изм. И дополнениями ВОЗ в 2024г.Ноздрачев А. Д., Маслюков П. М Нормальная физиология. Под ред. Ноздрачева А. Д М.: Изд. дом «Академия», 2023: 452-453.Селье Г. Очерки об адаптационном синдроме: Пер. с англ. М.: Медгиз, 1960: 255 с.Маркель А.Л., Калашникова Е.В., Горякин С. В. и др. Характеристика функциональной активности симпатоадреналовой системы у гипертензивных крыс линии НИСАГ // Бюл. экспер. биол. мед. 2006. 141. (3). 244-246.Шорин Ю.П., Маркель А.Л., Селятицкая В.Г. и др. Эндокринно-метаболические отношения у крыс с генетически обусловленной артериальной гипертензией // Бюл. экспер. биол. мед. 1990. 109. (6). 575-576.Flores-Aguilar LÁ, Cueto-Escobedo J, Puga-Olguín A, Olmos-Vázquez OJ, Rosas-Sánchez GU, Bernal-Morales B, Rodríguez-Landa JF. Behavioral Despair Is Blocked by the Flavonoid Chrysin (5,7-Dihydroxyflavone) in a Rat Model of Surgical Menopause.// Molecules. 2023 Jan 6;28(2):587. Koko V., Djordjeviw J., Cvijw G. et al. Effect of acute heat stress on rat adrenal glands: a morphological and stereological study // J. Exp. Biol. 2004. 207. 4225-42З0.Колдышева Е.В., Лушникова Е.Л. Ультраструктурная реорганизация коры надпочечников крыс после общего перегревания организма // Бюл. экспер. биол. мед. 2008. 145. (5). 591-596.Kajihara S., Sakamoto T., KachiA. A qualitative and quantitative electron microscopic study of differences in adrenomedullary adrenaline cells between golden hamsters and rats, with special reference to the Golgi apparatus // Arch. Histol. Cytol. 2007. 70. (3). 147-161.Lapyuneyong N, Tangsrisakda N, Choowong-In P, Chaisiwamongkol K, Uabundit N, Sawatpanich T, Arun S, Wu AT, Iamsaard S. /Seed extract of Thai Mucunapruriens reduced male reproductive damage in rats induced by chronic stress. //Pharm Biol. 2022 Dec;60(1):374-383. doi: 10.1080/13880209.2022.2034896. Young R.L., Jonsson J.R., Mano M.T. et al. Influence of alpha 1- and alpha 2-adrenoceptor antagonist therapy on the development of hypertension in spontaneously hypertensive rats // J. Cardiovasc. Pharmacol. 1993. 21. (5). 786-790.Селье Г. На уровне целого организма: Пер. с англ. М.: Наука, 1972: 121 с.Seyidoğlu N, Köşeli E, Gurbanlı R, Aydın C. The Preventive Role of Spirulina Platensis (Arthrospira Platensis) in Immune and Oxidative Insults in a Stress-induced Rat Model. JVetRes. 2021 Jun 8;65(2):193-200. doi: 10.2478/jvetres-2021-0033. eCollection 2021 Jun. Замощина Т.А., Гостюхина А.А., Зайцев К.В., Жукова О.Б., Светлик М.В., Абдулкина Н.Г., Зайцев А.А. Содержание кортикостерона и серотонина в сыворотке крови крыс в условиях десинхроноза и физического переутомления в разные сезоны года // Современные вопросы биомедицины. – 2018. – Т2(3). – С. 102-113.Muller-Hermelink H. The Human Thymus. Berlin: Springer Verlag, 1986: 207-269.Yoffey J, Courtice F. Lymphatic, lymph and lymphoid tissue. London: Univ. Press, 1970: 107 p.Cohen JJ. Glucocorticoid-induced apoptosis in the thymus. Sem. Immonol. 1982; 4: 363.Гостюхина А.А. Уровень серотонина в сыворотке крови крыс после физического переутомления в условиях светового десинхроноза в разные сезоны года / А.А. Гостюхина, Т.А. Замощина, К.В. Зайцев, О.Б. Жукова, М.В. Светлик, Н.Г. Абдулкина, Зайцев А.А. // Российский физиологический журнал им. И.М. Сеченова. - 2016. - Т. 102. № 9. - С. 1082-1088. Воеводин С.М. Возможности эхографического исследования тимуса у новорожденных. Вопр. охр. матер. и детства. 1989; 4: 38.Кузьменко Л.Г., Тюрин НА., Петру к Н.И. и др. Структурные изменения тимуса и иммунный статус в динамике осложненного течения острых респираторных заболеваний у детей раннего возраста. Детскиеинфекции. 2005; 4 (1): 25-29.Fuchs BA, Pruett SB. Morphine produces аpoptosis in murine thymocytes in vivo but not in vitro. J. Pharmacol. Expl. Therapeutics. 1993; 266: 652.Munck A, Guyre PM, Holbrook NJ. Physiological Fun-rtions of glucocorticoids in Stress and their relation toГеворкян В.С., Геворкян И.С. Современные исследования воздействия различных стресс-факторов на крыс и мышей//Электронное научное издание Альманах Пространство и Время. – 2017. – Т.15. – 1.YarilinAA. In: Consequences of the Chernobyl catastrophe on Humanhealth. Nova Science Publishers, Inc., Commal, New York, 1999: 81-104.Jacobs A. Цит. по Cапин М.Р., Никитюк Д.Б. Иммунная система, стресс и иммунодефицит. М.: АПП «Джангар», 2000: 157.Вихрук Т.И., Ткачук М.Г. Морфологические изменения вилочковой железы белых крыс, подвергнутых возрастающей физической нагрузке. Архив анат., гистол. и эмбриол. 1986; 11: 45-50.Мураева Н.А., Смирнова Т.С., Фёдорова О.В., Ткаченко Ю.А., ВондрачекЛ.В.. Влияние хроническогостресса на первичные и вторичные лимфоидные органы крыс и его обратимостьв зависимости от продолжительности стрессорного воздействия // Вестник ВОлгГМУ. – 2021. – Выпуск 2 (78). – С. 177-179
2. Ноздрачев А. Д., Маслюков П. М Нормальная физиология. Под ред. Ноздрачева А. Д М.: Изд. дом «Академия», 2023: 452-453.
3. Селье Г. Очерки об адаптационном синдроме: Пер. с англ. М.: Медгиз, 1960: 255 с.
4. Маркель А.Л., Калашникова Е.В., Горякин С. В. и др. Характеристика функциональной активности симпатоадреналовой системы у гипертензивных крыс линии НИСАГ // Бюл. экспер. биол. мед. 2006. 141. (3). 244-246.
5. Шорин Ю.П., Маркель А.Л., Селятицкая В.Г. и др. Эндокринно-метаболические отношения у крыс с генетически обусловленной артериальной гипертензией // Бюл. экспер. биол. мед. 1990. 109. (6). 575-576.
6. Flores-Aguilar LÁ, Cueto-Escobedo J, Puga-Olguín A, Olmos-Vázquez OJ, Rosas-Sánchez GU, Bernal-Morales B, Rodríguez-Landa JF. Behavioral Despair Is Blocked by the Flavonoid Chrysin (5,7-Dihydroxyflavone) in a Rat Model of Surgical Menopause.// Molecules. 2023 Jan 6;28(2):587.
7. Koko V., Djordjeviw J., Cvijw G. et al. Effect of acute heat stress on rat adrenal glands: a morphological and stereological study // J. Exp. Biol. 2004. 207. 4225-42З0.
8. Колдышева Е.В., Лушникова Е.Л. Ультраструктурная реорганизация коры надпочечников крыс после общего перегревания организма // Бюл. экспер. биол. мед. 2008. 145. (5). 591-596.
9. Kajihara S., Sakamoto T., KachiA. A qualitative and quantitative electron microscopic study of differences in adrenomedullary adrenaline cells between golden hamsters and rats, with special reference to the Golgi apparatus // Arch. Histol. Cytol. 2007. 70. (3). 147-161.
10. Lapyuneyong N, Tangsrisakda N, Choowong-In P, Chaisiwamongkol K, Uabundit N, Sawatpanich T, Arun S, Wu AT, Iamsaard S. /Seed extract of Thai Mucuna pruriens reduced male reproductive damage in rats induced by chronic stress. //Pharm Biol. 2022 Dec;60(1):374-383. doi: 10.1080/13880209.2022.2034896.
11. Young R.L., Jonsson J.R., Mano M.T. et al. Influence of alpha 1- and alpha 2-adrenoceptor antagonist therapy on the development of hypertension in spontaneously hypertensive rats // J. Cardiovasc. Pharmacol. 1993. 21. (5). 786-790.
12. Селье Г. На уровне целого организма: Пер. с англ. М.: Наука, 1972: 121 с.
13. Seyidoğlu N, Köşeli E, Gurbanlı R, Aydın C. The Preventive Role of Spirulina Platensis (Arthrospira Platensis) in Immune and Oxidative Insults in a Stress-induced Rat Model. J Vet Res. 2021 Jun 8;65(2):193-200. doi: 10.2478/jvetres-2021-0033. eCollection 2021 Jun.
14. Замощина Т.А., Гостюхина А.А., Зайцев К.В., Жукова О.Б., Светлик М.В., Абдулкина Н.Г., Зайцев А.А. Содержание кортикостерона и серотонина в сыворотке крови крыс в условиях десинхроноза и физического переутомления в разные сезоны года // Современные вопросы биомедицины. – 2018. – Т2(3). – С. 102-113.
15. Muller-Hermelink H. The Human Thymus. Berlin: Springer Verlag, 1986: 207-269.
16. Yoffey J, Courtice F. Lymphatic, lymph and lymphoid tissue. London: Univ. Press, 1970: 107 p.
17. Cohen JJ. Glucocorticoid-induced apoptosis in the thymus. Sem. Immonol. 1982; 4: 363.
18. Гостюхина А.А. Уровень серотонина в сыворотке крови крыс после физического переутомления в условиях светового десинхроноза в разные сезоны года / А.А. Гостюхина, Т.А. Замощина, К.В. Зайцев, О.Б. Жукова, М.В. Светлик, Н.Г. Абдулкина, Зайцев А.А. // Российский физиологический журнал им. И.М. Сеченова. - 2016. - Т. 102. № 9. - С. 1082-1088.
19. Воеводин С.М. Возможности эхографического исследования тимуса у новорожденных. Вопр. охр. матер. и детства. 1989; 4: 38.
20. Кузьменко Л.Г., Тюрин НА., Петру к Н.И. и др. Структурные изменения тимуса и иммунный статус в динамике осложненного течения острых респираторных заболеваний у детей раннего возраста. Детские инфекции. 2005; 4 (1): 25-29.
21. Fuchs BA, Pruett SB. Morphine produces аpoptosis in murine thymocytes in vivo but not in vitro. J. Pharmacol. Expl. Therapeutics. 1993; 266: 652.
22. Munck A, Guyre PM, Holbrook NJ. Physiological Fun-rtions of glucocorticoids in Stress and their relation to
23. Геворкян В.С., Геворкян И.С. Современные исследования воздействия различных стресс-факторов на крыс и мышей//Электронное научное издание Альманах Пространство и Время. – 2017. – Т.15. – 1.
24. Yarilin AA. In: Consequences of the Chernobyl catastrophe on Humanhealth. Nova Science Publishers, Inc., Commal, New York, 1999: 81-104.
25. Jacobs A. Цит. по Cапин М.Р., Никитюк Д.Б. Иммунная система, стресс и иммунодефицит. М.: АПП «Джангар», 2000: 157.
26. Вихрук Т.И., Ткачук М.Г. Морфологические изменения вилочковой железы белых крыс, подвергнутых возрастающей физической нагрузке. Архив анат., гистол. и эмбриол. 1986; 11: 45-50.
27. Мураева Н.А., Смирнова Т.С., Фёдорова О.В., Ткаченко Ю.А., Вондрачек Л.В.. Влияние хроническогостресса на первичные и вторичные лимфоидные органы крыс и его обратимостьв зависимости от продолжительности стрессорного воздействия // Вестник ВОлгГМУ. – 2021. – Выпуск 2 (78). – С. 177-179